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文檔簡介
1、目的:
本研究利用小鼠矽肺模型,通過氣管灌注β-catenin短發(fā)夾RNA(short hairpinRNA,shRNA)慢病毒載體懸液阻斷肺部的Wnt/β-catenin信號通路或者腹腔注射抗小鼠CD22單克隆抗體消除B10細胞,動態(tài)觀察矽肺進展過程中不同Th細胞亞群的數(shù)量及其相關(guān)細胞因子的變化,進而闡明矽肺發(fā)病過程中Wnt/β-catenin信號通路和B10細胞對Th免疫的調(diào)控作用,為探索矽肺的發(fā)病機制提供新的理論依據(jù)。<
2、br> 方法:
一、建立Wnt/β-catenin信號通路阻斷模型和B10消除模型
C57BL/6小鼠(6-8周,雌性)按體重隨機分組。非暴露式氣管內(nèi)灌注3×107TUβ-catenin shRNA慢病毒懸液,干擾小鼠肺部的β-catenin表達,建立Wnt/β-catenin信號通路阻斷模型,使用相同滴度的對照慢病毒建立對照模型;通過腹腔注射300μg anti-CD22 mA特異性消除小鼠體內(nèi)B10細胞,建立B
3、10消除模型,并使用等體積IgG1同型抗體作為對照。對照組和模型組小鼠分別進行非暴露式氣管內(nèi)灌注相同體積的生理鹽水和二氧化硅顆粒懸液。將各組小鼠分別于灌注后7、28、56天后處死,收集肺組織、脾組織、肺門淋巴結(jié)(hilar lymph node,HLN)、肺泡灌洗液(bronchoalveolar lavage fluid,BALF),經(jīng)過相應的處理后進行實驗測定。
二、炎性細胞分類計數(shù)
將收集的肺泡灌沈液通過300
4、0 rpm低溫離心10 min,獲取細胞并重懸于1 ml磷酸鹽緩沖液(phosphate buffer solution,PBS)制備單細胞懸液,取10μl細胞懸液置于細胞計數(shù)板上,進行細胞計數(shù)。細胞濃度=(四個大格的細胞總數(shù)/4)×104。取400μl細胞懸液,低溫3000 rpm離心10 min,棄上清,加入20μl小牛血清混勻,吸取5μl推片,室溫晾干后甲醇固定,待甲醇晾干后使用Wright-Giemsa染液進行雙染,室溫染色10
5、 min后蒸餾水沖洗玻片背面。顯微鏡下計數(shù)200個細胞中淋巴細胞,中性粒細胞,巨噬細胞的數(shù)量。
三、病理切片染色
肺組織常規(guī)石蠟切片(5μm)進行蘇木素伊紅(Hematoxyln&Eosin,H&E)染色??酒?石蠟切片放入烘箱內(nèi)60℃烘烤2h。脫蠟:將切片在二甲苯Ⅰ和二甲苯Ⅱ中各浸泡10 min。脫二甲苯:梯度酒精由高濃度至低濃度浸泡各5 min,最后用流水沖洗。細胞核染色:蘇木素染液浸染10 min,流水沖洗。分
6、化:2%鹽酸酒精浸泡20 s至1 min,流水沖洗。返藍:自來水浸泡2h。細胞漿染色:0.5%伊紅染液浸染1至2 min,流水沖洗。脫水:梯度酒精由低濃度至高濃度浸泡各5 min。透明:二甲苯Ⅱ浸泡10 min,換到二甲苯Ⅰ再浸泡10 min。封片:從二甲苯中取出后馬上滴加中性樹膠并使用蓋玻片封片。
肺組織常規(guī)石蠟切片(5μm)進行Masson染色??酒?石蠟切片放入烘箱內(nèi)60℃烘烤2h。脫蠟:將切片在二甲苯Ⅰ和二甲苯Ⅱ中各浸
7、泡10 min。脫二甲苯:梯度酒精由高濃度至低濃度浸泡各5 min,最后用流水沖洗。細胞核染色:蘇木素染液浸染10 min,流水沖洗。分化:2%鹽酸酒精浸泡20 s至1 min,流水沖洗。肌纖維染色:麗春紅酸性復紅溶液浸染5 min,0.2%冰醋酸浸洗片刻。分化:1%磷鉬酸溶液浸染5 min。膠原纖維染色:苯胺藍染液浸染5 min,0.2%冰醋酸浸洗片刻。脫水:梯度酒精由低濃度至高濃度浸泡各5 min。透明:二甲苯Ⅱ浸泡10 min,換
8、到二甲苯Ⅰ再浸泡10 min。封片:從二甲苯中取出后馬上滴加中性樹膠并使用蓋玻片封片。
四、流式細胞術(shù)
取脾、肺門淋巴結(jié)細胞各1×106加入1 ml含有胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)的1640培養(yǎng)基中,加入2μl刺激劑37℃培養(yǎng)5h后收集細胞,staining buffer清洗兩次,表面染色;staining buffer清洗兩次,固定-破膜液孵育細胞;固定-破膜緩沖液清洗細胞兩次,細胞內(nèi)染
9、色;staining buffer清洗兩次,加入300μl1%多聚甲醛重懸細胞,F(xiàn)ACSCantoⅡ流式細胞儀檢測,Diva軟件進行分析。
結(jié)果:
一、阻斷Wnt/β-catenin信號通路加重矽肺炎癥并減輕纖維化
使用慢病毒阻斷Wnt/β-catenin通路后,二氧化硅顆粒誘導的矽肺炎癥明顯加重。早期時間點慢病毒處理組小鼠表現(xiàn)出嚴重的細胞浸潤,同時炎性細胞因子TNF-α、IL-1β和IL-6大量分泌,顯著
10、高于模型組與對照病毒組;隨著疾病進展,模型組與對照病毒組的炎癥逐漸消退,浸潤的炎性細胞減少,肺泡壁發(fā)生增厚并出現(xiàn)細胞性結(jié)節(jié),而慢病毒處理組在28、56天依然處于炎癥階段,可見明顯的炎性細胞浸潤。同時,由于炎癥持續(xù)存在,纖維化的發(fā)生受到了抑制,56天時慢病毒處理組的膠原沉積明顯較輕。
二、阻斷Wnt/β-catenin-號通路可以促進Th17反應
早期炎癥階段,慢病毒處理組小鼠Th17反應顯著增強。通過對Th17細胞進
11、行分析,結(jié)果顯示早期炎癥階段CD4+T細胞中Th17細胞比例顯著增加,其特異性細胞因子Il17a、Il21 mRNA表達水平也有顯著增高。調(diào)控Th17分化增殖的細胞因子中,Il6 mRNA在7天時間點的大量表達是Th17細胞增多的主要原因,而Il23在三個時間點的表達與模型組、對照病毒組相比沒有差異。
三、阻斷Wnt/β-catenin信號通路延緩Th1向Th2極化的過程
阻斷wnt信號通路后,Th1反應增強,其中T
12、h1細胞占CD4+T細胞的比例在7天、56天都顯著高于模型組和對照病毒組,Th1特異性細胞因子Ifng mRNA在7天也有明顯升高。Th2細胞的特異性核轉(zhuǎn)錄因子Gata3及其表達的促纖維化因子Il4、Il13 mRNA在56天均明顯低于模型組和對照病毒組。因此,在矽肺的疾病進展過程中,晚期纖維化階段慢病毒處理組Th2反應受到抑制,同時Th1反應仍處于較高水平,使Th1向Th2極化的過程發(fā)生延緩,最終導致纖維化程度減輕。
四、阻
13、斷Wnt/β-catenin信號通路通過抑制Tregs調(diào)控Th免疫反應
流式細胞術(shù)結(jié)果顯示,慢病毒處理組Tregs在7天顯著減少,通過RealtimeRT-PCR檢測Tregs特異性核轉(zhuǎn)錄因子顯示,F(xiàn)oxp3 mRNA在7天同樣顯著減少,與Tregs的趨勢相一致。同時,Tregs表達的抑制性細胞因子Tgfb和Il10 mRNA在7、56天均低于模型組和對照病毒組。因此,阻斷Wnt信號通路可以抑制Tregs及其所分泌的細胞因子,
14、引起Tregs介導的免疫抑制能力降低。
五、B10細胞參與調(diào)控矽肺炎癥纖維化
對小鼠進行氣管內(nèi)灌注二氧化硅懸液后,應用流式細胞術(shù)檢測小鼠肺門淋巴結(jié)內(nèi)及脾組織內(nèi)B10細胞的含量,結(jié)果顯示模型組小鼠在7、28、56三個時間點的B10細胞均顯著高于對照組。提示B10細胞參與調(diào)控矽肺的炎癥和纖維化。此外,腹腔注射anti-CD22單克隆抗體后,灌注了二氧化硅的小鼠肺門淋巴結(jié)和脾組織內(nèi)的B10細胞含量較模型組顯著減少,證明an
15、ti-CD22單克隆抗體可以有效消除小鼠體內(nèi)的B10細胞。
六、消除B10細胞加重矽肺的炎癥并減輕纖維化
病理結(jié)果顯示,矽肺小鼠在消除B10細胞后,早期的矽肺炎癥相相較于模型組明顯加重,肺泡滲出液及炎性細胞聚集增多。此外,7天時間點B10細胞消除組小鼠的肺泡灌洗液中細胞總數(shù)以及炎性細胞因子TNF-α、IL-6也顯著高于模型組,其中細胞分類計數(shù)結(jié)果證明B10細胞消除可以誘導淋巴細胞的大量聚集。28天時肺部炎癥逐漸減輕,
16、模型組開始出現(xiàn)小的細胞結(jié)節(jié)和肺泡壁增厚,而B10細胞消除的矽肺小鼠未出現(xiàn)細胞結(jié)節(jié),仍處于炎癥階段。56天時小鼠的矽肺炎癥基本消失,模型組小鼠出現(xiàn)較大的細胞性結(jié)節(jié),B10細胞消除組可見小的細胞結(jié)節(jié),肺泡壁增厚相對較輕。Masson染色顯示B10細胞消除組小鼠肺部膠原沉積相對較輕,同時經(jīng)Realtime PCR測定,促纖維化細胞因子TGF-β mRNA表達量在28、56天均顯著低于模型組。
結(jié)論:
1、阻斷Wnt/β-c
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