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文檔簡介
1、目的:糖尿病腎病(Diabetic Nephropathy,DN)是糖尿病(Diabetesmellitus,DM)全身微血管病變的腎臟特征表現(xiàn),也是DM病人導(dǎo)致慢性腎衰竭的最主要原因。據(jù)統(tǒng)計,Ⅰ型DM約20%-40%、Ⅱ型DM約10%-20%的患者發(fā)生腎臟病變。DN是Ⅰ型DM最主要死亡原因,在Ⅱ型DM中其嚴重性僅次于心血管并發(fā)癥。DN的早期表現(xiàn)為腎小球系膜增生,基膜增厚,細胞外基質(zhì)積聚,最終導(dǎo)致腎小球硬化。系膜細胞是腎小球內(nèi)產(chǎn)生細胞外
2、基質(zhì)的主要固有細胞,通過其自身代謝和功能改變直接影響DN進程。目前DN發(fā)病內(nèi)在機理尚未闡明,但已公認其發(fā)生、發(fā)展的中心環(huán)節(jié)是氧化應(yīng)激。
本課題組前期研究結(jié)果顯示,在DM大鼠腎臟組織中氧化應(yīng)激反應(yīng)關(guān)鍵酶-誘導(dǎo)型一氧化氮合酶(inducible nitric oxide synthase,iNOS)的mRNA和蛋白表達水平明顯上調(diào),iNOS活性顯著增高,其合成的一氧化氮(nitric oxide,NO)大量增加,過量產(chǎn)生的NO與超
3、氧陰離子(superoxide,O2-)快速反應(yīng)生成過氧亞硝基陰離子(peroxynitrite,ONOO-)。ONOO-及其衍生物的氧化能力較H2O2強約2000倍,可造成嚴重氧化應(yīng)激損傷。
已知核轉(zhuǎn)錄因子NF-κB(nuclear factor-kappa B,NF-κB)是iNOS基因轉(zhuǎn)錄最主要的調(diào)控因子。NF-κB家族包括p50、p52、p65(Rel-A)、c-Rel和Rel-B五個成員。它們通常以同源或異源二聚體形
4、式存在,其中以p50-p65二聚體最為常見。一般情況下,p50-p65二聚體與NF-κB抑制蛋白(Inhibitory kappa B protein,IκB)以非活性狀態(tài)的三聚體形式存在于細胞漿中。作為一種快反應(yīng)轉(zhuǎn)錄因子,被激活的NF-κB與IκB解離后入核,結(jié)合順式作用元件,調(diào)控下游基因轉(zhuǎn)錄。
C-肽是胰島素原分子中連接胰島素A鏈與B鏈的連接肽。人C-肽由31個氨基酸殘基組成,分子量3020D,等電點3.0,半衰期30mi
5、n,主要經(jīng)腎臟代謝。正常人血漿C-肽基礎(chǔ)水平約為0.4nmol/L。最初,C-肽被認為是胰島素合成過程中的副產(chǎn)物,一種無生物活性的“生物垃圾”。隨后,C肽被發(fā)現(xiàn)在胰島素原分子中對胰島素原分子的折疊、二硫鍵的正確配對等分子結(jié)構(gòu)的形成起重要作用,但血液中游離C-肽的生理功能卻一直不清楚。近年臨床應(yīng)用和基礎(chǔ)研究均發(fā)現(xiàn),C-肽防治DN療效獨特,接近生理濃度的C-肽可部分恢復(fù)受損的腎小球功能,抑制細胞外基質(zhì)增生,明顯改善腎小球超微結(jié)構(gòu),逆轉(zhuǎn)其纖維
6、化。到目前為止,除C-肽外,尚無其它任何藥物或治療方法可有效逆轉(zhuǎn)DN。雖然C-肽有此功能,但作用機制未明,亟待研究。
鑒于C-肽能有效逆轉(zhuǎn)DN,而氧化應(yīng)激已被證明是DN發(fā)生的中心環(huán)節(jié),氧化應(yīng)激反應(yīng)關(guān)鍵酶iNOS主要受到NF-κB調(diào)控,我們推測:C-肽通過調(diào)控NF-κB-iNOS途徑,達到逆轉(zhuǎn)DN的功效。
那么,正常(低糖,5mmool/L)和高糖(25mmol/L)狀態(tài)下培養(yǎng)大鼠腎小球系膜細胞,給予不同濃度的C-肽、
7、作用不同時間后,C-肽在細胞中的功能定位如何;不同C-肽濃度、不同作用時間對細胞中iNOS的表達水平有何影響;高糖處理系膜細胞對其NF-κ3的核轉(zhuǎn)位有何影響;一定濃度C-肽作用系膜細胞后,NF-κB的核轉(zhuǎn)位有何變化,未見報道。
本實驗采用大鼠腎小球系膜細胞株HBZY-1,應(yīng)用高糖模擬糖尿病高糖狀態(tài),應(yīng)用不同濃度C-肽、作用不同時間進行實驗。以免疫熒光染色法觀察C-肽在HBZY-1細胞中的功能定位;以實時定量PCR法檢測iNOS
8、表達水平的變化,來測定C-肽的有效濃度和起效時間;用免疫熒光染色法,以NF-κBp65亞基為檢測標(biāo)準,來測定NF-κB的核轉(zhuǎn)位及檢測C-肽對NF-κB核轉(zhuǎn)位的影響,為深入研究C-肽調(diào)控NF-κB-iNOS途徑的分子機制奠定實驗基礎(chǔ)。
方法:
1細胞培養(yǎng)
購買低糖(5mmol/L)DMEM、高糖(25mmol/L)DMEM和0.25%EDTA-胰蛋白酶消化液,用含10%胎牛血清的低糖DMEM,在37℃、5%C
9、O2培養(yǎng)箱中進行細胞培養(yǎng)和傳代。
2實驗設(shè)計與分組
細胞分組定義:正常組:HBZY-1細胞正常培養(yǎng)(低糖DMEM)后,換成C-肽-低糖DMEM培養(yǎng);防治組:HBZY-1細胞正常培養(yǎng)后,換成C-肽-高糖DMEM培養(yǎng);治療組:HBZY-1細胞高糖DMEM培養(yǎng)24h后,換成C-肽-高糖DMEM培養(yǎng)。
2.1探討治療組HBZY-1細胞,同一時間點,不同濃度C-肽在細胞內(nèi)定位情況。
治療組細胞,C-肽-高糖
10、DMEM作用30min,根據(jù)C-肽濃度不同分為5組:2、3、4、5、6μmol/L。
2.2探討正常組、防治組和治療組HBZY-1細胞,同一濃度,不同時間點C-肽在細胞內(nèi)定位情況。
正常組、防治組和治療組細胞,均加入C-肽濃度5μmol/L的高糖DMEM。正常組和防治組作用時間為:0、5、10、20、40、60、80、100、120min。治療組作用時間分為:0、5、10、20、40、60min。
2.3探
11、討高糖對HBZY-1細胞中iNOS表達水平的影響。
用高糖DMEM培養(yǎng)HBZY-1細胞,根據(jù)高糖作用時間不同分為11組:正常對照、高糖0.5、1、1.5、2、2.5、3、3.5、4、4.5、5h。
2.4探討C-肽對HBZY-1細胞中iNOS表達水平的影響。
C-肽-高糖DMEM作用防治組細胞4h,根據(jù)C-肽濃度不同分為8組:正常對照、C-肽-高糖0、500、50、5、1、0.5、0.1nmol/L。
12、> C-肽-高糖DMEM作用治療組細胞,根據(jù)0.5nmol/L C-肽作用細胞時間不同分為8組:正常對照、C-肽-高糖0、0.5、1、2、4、6、8h。
2.5探討高糖狀態(tài)下,HBZY-1細胞中NF-κB核轉(zhuǎn)位情況。
用高糖DMEM作用HBZY-1細胞,根據(jù)高糖作用時間不同分為9組:0、5、10、15、20、25、30、35、40min。
用高糖DMEM作用HBZY-1細胞,續(xù)40min之后,根據(jù)高糖作用
13、時間不同分為34組:45、50、55、60、65、70、75、80、85、90、95、100、105、110、115、120、125、130、135、140、145、150、155、160、165、170、175、180、185、190、195、200、205、210min。
2.6探討高糖狀態(tài)下,C-肽作用后,HBZY-1細胞中NF-κB核轉(zhuǎn)位情況。
根據(jù)培養(yǎng)條件不同分為3組:正常對照、高糖對照和0.5nmol/L
14、C-肽-高糖DMEM,作用時間為35min。
3 C-肽功能定位、NF-κB核轉(zhuǎn)位及C-肽影響NF-κ3核轉(zhuǎn)位的形態(tài)學(xué)觀察。
免疫熒光染色法觀察HBZY-1細胞中C-肽的功能定位、NF-κB是否轉(zhuǎn)運到細胞核內(nèi)、C-肽是否能影響NF-κ3的核轉(zhuǎn)位。
結(jié)果:
1治療組HBZY-1細胞,同一時間點,不同濃度C-肽在細胞內(nèi)定位情況。
免疫熒光顯示,各組C-肽主要分布在細胞核內(nèi)。C-肽在細胞中的熒
15、光強度隨C-肽濃度增大而增強,且C-肽濃度為5μmol/L時最為顯著。因此選5μmol/L的C-肽為研究C-肽功能定位的最佳濃度。(見Fig.1)
2正常組、防治組和治療組HBZY-1細胞,同一濃度,不同時間點C-肽在細胞內(nèi)定位情況。
免疫熒光顯示,正常組細胞在120min內(nèi)均未檢測到C-肽熒光;(見Fig-2A)防治組細胞前60min亦未在細胞內(nèi)檢測到C-肽熒光,但80、100和120min均發(fā)現(xiàn)C-肽熒光積聚于核
16、;(見Fig.2B)治療組細胞5min時即在核內(nèi)觀測到C-肽熒光,且C-肽熒光強度隨C-肽加入時間延長而增強,20min時最為顯著。(見Fig.2C)
3高糖對HBZY-1細胞中iNOS表達水平的影響。
Real-time PCR結(jié)果顯示:細胞中iNOS的表達水平隨高糖處理時間延長而升高,以4h(0.5927±0.04709)最為顯著。(見Fig.3,Table1)
4 C-肽對HBZY-1細胞中iNOS表
17、達水平的影響。
Real-time PCR結(jié)果顯示:6種不同濃度C-肽均可抑制防治組細胞iNOS的表達水平,但該抑制作用不隨C-肽濃度增大而增強,C-肽濃度為0.5nmol/L時最為顯著(0.0437±0.00496)。(見Fig.4A,Table2)
隨0.5nmol/L濃度C-肽作用于治療組細胞時間的延長,細胞中iNOS的表達水平被抑制,6h(0.0575±0.00507)最為顯著。(見Fig.4B,Table3
18、)
5高糖狀態(tài)下,HBZY-1細胞中NF-κB核轉(zhuǎn)位情況。
免疫熒光顯示,高糖培養(yǎng)HBZY-1細胞35min時,NF-κB核轉(zhuǎn)位最為顯著。(見Fig.5A)由45min到210min,每隔5min觀測一次,結(jié)果顯示:NF-κB核轉(zhuǎn)位具有周期振蕩現(xiàn)象,NF-κB從胞漿-胞核-胞漿進出過程需約50min,且趨勢漸緩,隨高糖刺激時間增長,NF-κB傾向于滯留核內(nèi)。(見Fig.5B)
6高糖狀態(tài)下,應(yīng)用C-肽后,H
19、BZY-1細胞中的NF-κB核轉(zhuǎn)位。
免疫熒光顯示,與高糖對照組相比,C-肽-高糖DMEM組細胞核內(nèi)NF-κB核轉(zhuǎn)位顯著減少。(見Fig.6)
結(jié)論:
1實驗證實5μmol/L C-肽是觀察其功能定位最佳濃度。
2本研究發(fā)現(xiàn):不同糖濃度、時間處理的系膜細胞,對C-肽的通透狀態(tài)決然不同:C-肽可快速(5min)進入治療組細胞中,且主要在核內(nèi)聚集,C-肽熒光強度隨其加入時間延長而增強,20min時最為
20、顯著;防治組細胞在80min后,始見C-肽進入細胞核;C-肽不進入正常組細胞。但其機制不明,值得探討。
3 C-肽可明顯抑制高糖引起的系膜細胞iNOS高表達,其抑制強度以0.5nmol/L C-肽濃度最為顯著,且該抑制作用不隨C-肽濃度增大而增強。
4實驗觀察到:高糖刺激系膜細胞,NF-κB核轉(zhuǎn)位以35min時最為顯著。在45min到210min期間觀測到:NF-κB核轉(zhuǎn)位具有周期振蕩現(xiàn)象,即NF-κB從胞漿-胞核-
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