2023年全國碩士研究生考試考研英語一試題真題(含答案詳解+作文范文)_第1頁
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文檔簡介

1、T,B淋巴細胞是機體獲得性免疫應答的重要組成部分,她們的正常發(fā)育是機體對外來微生物入侵產(chǎn)生有效免疫應答的基礎(chǔ),其異常的發(fā)育則是自身免疫性疾病的基本病因之一。解開他們的發(fā)育過程及分子機制之謎一直是免疫學家孜孜以求的目標。其發(fā)育過程是細胞分化,增殖和凋亡等多種基本生命現(xiàn)象協(xié)同作用的結(jié)果,涉及多種信號轉(zhuǎn)導通路的參與。 Notch信號途徑是通過膜表面受體介導細胞與細胞間相互作用,來調(diào)節(jié)前體細胞和干細胞的分化方向,從而調(diào)節(jié)相鄰細胞間分化的

2、基本信號途徑之一。它在進化中高度保守,在從線蟲到人,從胚胎發(fā)育到成年個體的多種系統(tǒng)中都發(fā)揮著重要作用。Notch信號通路通過調(diào)控前體細胞的分化方向,在淋巴細胞發(fā)育中同樣發(fā)揮著重要作用。這已在淋巴細胞發(fā)育的多個環(huán)節(jié)如T/B 細胞的分化、脾臟中邊緣帶B細胞和濾泡B細胞的分化中得到證實。但Notch信號途徑在淋巴細胞發(fā)育其他環(huán)節(jié)中的作用并不清楚,而在已知可發(fā)揮作用的環(huán)節(jié)中的分子機制也為未解之謎。值得注意的是,哺乳類的四種Notch受體都需要轉(zhuǎn)

3、錄因子RBP-J介導其轉(zhuǎn)錄激活活性,將其敲除可以阻斷4種Notch受體的信號,從而獲得完全的Notch信號通路的loss of function的模型。 為進一步研究Notch信號途徑在T 淋巴細胞發(fā)育和功能中的作用,基于組織特異性剔除Cre-LoxP系統(tǒng)的原理,我們建立了在T細胞中特異性剔除RBP-J的條件性剔除小鼠—Lck-Crex RBP-Jflox/flox小鼠,并對它們進行了初步的表型分析。為此,我們構(gòu)建了在T 細胞

4、中特異性表達Cre重組酶的轉(zhuǎn)基因表達載體pLck-Cre,通過顯微注射方法,建立了共20系Lck-Cre轉(zhuǎn)基因小鼠。我們將這些小鼠分別與本室擁有的RBP-J條件性剔除小鼠進行交配,并采用Southern Blot對不同Lck-Cre來源的Lck-Cre x RBP-Jflox/+雜合子小鼠的胸腺細胞中RBP-J的剔除效率進行了鑒定,最終鑒定得到胸腺細胞中RBP-J被完全剔除的兩系小鼠-M5 Lck-Cre,M19 Lck-Cre。我們進

5、一步將這兩系小鼠來源的基因型為Lck-Cre x RBP-Jflox/+的雜合子小鼠進行交配,以獲得Lck-Cre x RBP-Jflox/flox小鼠進行表型分析。 對M19 Lck-Cre x RBP-Jflox/flox小鼠的表型分析結(jié)果顯示,剔除小鼠胸腺細胞中αβT細胞發(fā)育和γδ T細胞發(fā)育均未見異常。AnnexinV染色顯示剔除小鼠胸腺中DP細胞(CD4+CD8+)的凋亡增加,提示了Notch/RBP-J信號通路在胸

6、腺細胞中的抗凋亡作用。另發(fā)現(xiàn)脾臟中RBP-J缺失的CD4 T細胞的體外增殖能力減弱,提示Notch信號通路可促進外周CD4 T細胞的增殖,而且此過程是RBP-J依賴的。M5 Lck-Cre x RBP-Jflox/flox小鼠的表型分析結(jié)果顯示,純合子小鼠胸腺中αβT細胞發(fā)育受阻,但γδ T細胞的發(fā)育未見異常,這提示Notch/RBP-J信號通路對αβT細胞的早期發(fā)育具有促進作用。 本課題組前期的研究發(fā)現(xiàn)Notch/RBP-J

7、信號通路還決定了脾臟中B細胞的分化命運,可促進邊緣帶B細胞的發(fā)育而抑制前體細胞向濾泡B細胞的分化,但下游靶基因并不清楚。為此,我們對脾臟中這兩群來自于共同前體細胞的B細胞亞群-邊緣帶B細胞和濾泡B細胞進行了基因表達譜的對比分析,結(jié)果顯示,共有1226個基因在濾泡B細胞高表達,而1754個基因在邊緣帶B細胞中高表達。我們對所有差異表達的基因進行了注釋、功能分類以及進一步的分析,發(fā)現(xiàn)Notch信號通路的一系列分子包括膜表面受體Notch2,

8、胞漿內(nèi)的調(diào)節(jié)蛋白Deltex及負調(diào)控分子MINT,在兩群B細胞中均呈差異表達。與以往的分析一致,Notch信號通路表現(xiàn)為在邊緣帶B細胞中的高度活化。另外,已知Hes家族分子是Notch信號通路的主要的下游靶基因,芯片結(jié)果提示Hes家族成員分子之一Hes5只表達于邊緣帶B細胞,在濾泡B細胞并不表達,這提示我們Hes5很可能是Notch/RBP-J信號通路調(diào)控外周B細胞分化的直接的下游靶基因。 隨后,我們圍繞兩群B細胞差異表達的膜表

9、面分子和受體展開了一些工作。 首先,基于芯片結(jié)果的提示和后續(xù)的流式細胞分析,我們發(fā)現(xiàn)CD36,一種B型清道夫受體,在邊緣帶B細胞中高表達,而在濾泡B細胞中幾乎不表達;CD68,CD49e在濾泡B細胞中不表達,在邊緣帶B細胞中以較低水平表達;CD44在兩群B細胞中都表達,在邊緣帶B細胞中的表達水平高于濾泡B細胞。其中CD36因為其特異的表達模式,可以作為邊緣帶B細胞的新的表面標志。CD36參與脂肪代謝,參與巨噬細胞對P. Falc

10、iparum 感染的紅細胞,凋亡的單核細胞和粒細胞的吞噬,它在邊緣帶B細胞中的特異表達可能與這群B細胞在先天性免疫應答中對血源播散性病原體的清除有關(guān)。 另外,我們發(fā)現(xiàn)兩群B細胞呈現(xiàn)多種細胞因子受體的差異表達,這與兩群B細胞對細胞因子的差異應答有關(guān)。其中,與在對胸腺依賴性抗原應答的作用相一致,濾泡B細胞高表達CD124分子;而半定量RT-PCR的結(jié)果顯示邊緣帶B細胞具有較高水平的CD131的mRNA,可能與邊緣帶B細胞受到刺激后

11、的快速活化有關(guān)。 最后,芯片結(jié)果提示趨化因子受體CXCR7在兩群B細胞中呈差異表達。為進一步闡明該受體在介導邊緣帶B細胞定位中的作用,我們制備了抗趨化因子受體CXCR7的抗血清,發(fā)現(xiàn)CXCR7在骨髓,脾臟,淋巴結(jié),腹腔等多種淋巴器官的B細胞上均有表達,但在T細胞表面沒有表達。在脾臟中,在新生B細胞的表面沒有表達,在濾泡B細胞和邊緣帶B細胞中均有表達,在后者中的表達較高于前者。CXCR7在腹腔中的兩群B細胞中呈現(xiàn)差異性表達,在B1

12、細胞中的表達高于在B2細胞中的表達,可能和B1細胞的特殊定位以及在天然免疫應答中的作用有關(guān)。 綜上,我們建立了在T細胞中特異性剔除Notch信號途徑關(guān)鍵轉(zhuǎn)錄因子RBP-J的條件性剔除小鼠,在此基礎(chǔ)上發(fā)現(xiàn)Notch/RBP-J信號通路在體內(nèi)可抑制胸腺細胞的凋亡,促進外周CD4 T細胞的增殖,這些研究進一步揭示了該信號通路的體內(nèi)功能。另外,我們對濾泡B細胞和邊緣帶B細胞進行了基因表達譜的對比分析,進一步的注釋分析提示Hes家族成員分

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