2023年全國碩士研究生考試考研英語一試題真題(含答案詳解+作文范文)_第1頁
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文檔簡介

1、<p>  本科畢業(yè)設(shè)計(論文)</p><p><b> ?。ǘ?屆)</b></p><p>  多酚氧化酶活性測定及控制   </p><p>  所在學院 </p><p>  專業(yè)班級 生物工程 &l

2、t;/p><p>  學生姓名 學號 </p><p>  指導教師 職稱 </p><p>  完成日期 年 月 </p><p>  摘要:研究抑制多酚氧化酶(PPO)活性的方法,為蓮藕保鮮過程中控制褐變提供理

3、論依據(jù)。試驗研究了溫度、pH值、底物濃度以及抑制劑對蓮藕多酚氧化酶(PPO)的影響。結(jié)果表明:蓮藕PPO最適pH值為7.5,最適溫度為35℃。亞硫酸鈉、抗壞血酸(Vc)對蓮藕PPO活性具有較好抑制作用,檸檬酸、半胱氨酸也對蓮藕PPO活性具有一定抑制作用。可以通過浸泡亞硫酸鈉和抗壞血酸(Vc)、調(diào)節(jié)pH值、低溫貯藏等方法來抑制蓮藕PPO活性,控制蓮藕褐變。</p><p>  關(guān)鍵詞:多酚氧化酶;活性測定;抑制劑

4、 </p><p>  Activity Determining and Inhibiting Polyphenol Oxidase</p><p>  Abstract:[Objective] The research ami ed to study the enzymatic characteristics ofPPO in lotus sprou.t [Method] The

5、 effects of temperature, pH value and inhibitorsonPPO activity of lotus sproutwere studied using spectrophotometrymethod, catecholas substrate, and the reaction kinetic equationwas established. [Result] The results showe

6、d that the optmi um temperature and pH were 30℃and 6. 0 respectively. PPOwas inactivitywhen keeping heat in 70℃by 60min. Ascorbic acid, citric acid,L-cysteine and st</p><p>  Key words: PPO;Inhibitor;Activit

7、y detection</p><p><b>  目 錄</b></p><p><b>  1 緒論1</b></p><p>  1.1選題背景及意義1</p><p>  1.2 最新研究成果及動態(tài)1</p><p>  1.2.1 鮮切蓮藕組織中多酚

8、氧化酶的分離純化1</p><p>  1.2.2 不同小麥多酚氧化酶活性檢測方法的比較1</p><p>  1.2.3 PPO活性與小麥粉主要理化指標的關(guān)系2</p><p>  1.2.4 核桃組織培養(yǎng)中外植體褐變多酚氧化酶活性的控制2</p><p>  1.2.5 石榴果皮中的多酚氧化酶(PPO)活性測定的最佳試驗條

9、件2</p><p>  1.2.6 純化的蓮藕多酚氧化酶(PPO)與底物和抑制劑相互作用時的二級結(jié)構(gòu)變化2</p><p>  1.2.7 磁場和抑制劑對蓮藕多酚氧化酶反應(yīng)動力學的影響2</p><p>  1.2.8 南湖菱果中多酚氧化酶抑制劑對其活性的影響3</p><p>  1.2.9 二氧化氯(ClO2)對鮮切蓮藕

10、在低溫貯藏期間多酚氧化酶(PPO)的影響3</p><p>  1.2.10 底物濃度、pH、溫度對鮮切蓮藕中PPO酶的影響3</p><p>  1.2.11 抑制劑對多酚氧化酶活性的影響3</p><p>  1.2.12 護色處理對多酚氧化酶活性的影響3</p><p>  1.2.13 氣調(diào)包裝對鮮切蓮藕的保鮮效果4

11、</p><p>  2.1 主要試劑及設(shè)備5</p><p>  2.1.1 實驗材料5</p><p>  2.1.2 主要試劑與儀器5</p><p>  2.2 實驗流程6</p><p>  2.3 分析方法6</p><p>  2.3.1 粗酶液的制備6&l

12、t;/p><p>  2.3.2 PPO活性的測定7</p><p>  2.3.3 溫度對多酚氧化酶活性的影響7</p><p>  2.3.4 pH對多酚氧化酶活性的影響7</p><p>  2.3.5底物濃度對PPO活性的影響7</p><p>  2.3.6 抑制劑對多酚氧化酶活性的影響7&l

13、t;/p><p>  2.3.7 用抑制劑對自制的粗酶液進行活性測定分析8</p><p>  3 結(jié)果與分析9</p><p>  3.1 溫度對PPO活性的影響9</p><p>  3.2 pH對PPO活性的影響10</p><p>  3.3 底物濃度對PPO活性的影響10</p>

14、<p>  3.4 抑制劑對PPO活性的影響12</p><p>  3.4.1 L-半胱氨酸對25KU多酚氧化酶活性的影響12</p><p>  3.4.2 單抑制劑對PPO活性的影響13</p><p><b>  4 結(jié)論15</b></p><p><b>  參考文獻16<

15、/b></p><p>  致 謝錯誤!未定義書簽。</p><p><b>  1 緒論</b></p><p>  1.1選題背景及意義</p><p>  多酚氧化酶(Polyphenol oxidase,PPO)是植物體內(nèi)普遍存在的一種非線粒體內(nèi)的含銅末端氧化酶(Mayer 1987;Mayer&a

16、mp;Harel,1991)。它包括單酚氧化酶、雙酚氧化酶和漆酶。它廣泛存在于自然界,在果實和蔬菜收獲后,PPO所引起的反應(yīng)常常會使果肉發(fā)生褐變、產(chǎn)生異味和損失營養(yǎng)。多酚氧化酶(PPO)作為一種植物酶類,是引起果蔬褐變的主要因素。鮮切果蔬因組織被切分使PPO與酚類底物的接觸機會增加,酚類物質(zhì)被氧化成棕褐色的醌,導致產(chǎn)品褐變。抑制PPO活性取決于抑制劑的性質(zhì)和濃度、底物的可利用性、pH值和溫度。一些還原劑、酶類、螯合劑和蜂蜜等均已被用于防

17、止果蔬酶褐變。本文總結(jié)了多酚氧化酶的活性測定方法以及對其活性的控制,主要研究了抑制劑對其活性的影響,為果蔬貯藏和加工中酶促褐變的防治提供思路。 </p><p>  1.2 最新研究成果及動態(tài) </p><p>  1.2.1 鮮切蓮藕組織中多酚氧化酶的分離純化</p><p>  從鮮切藕中粗提多酚氧化酶,并通過硫酸銨鹽析沉淀,DEAE-SepH-Arose離

18、子交換柱層析以及PHenyl SepHArose 6FAsT Flow疏水柱層析進行純化后,經(jīng)SDS-PAGE電泳確定為單一條帶,表明該酶已被純化到電泳均一。在整個過程中,該酶純化了95.66倍,產(chǎn)率為2.4%。同時研究表明,鮮切蓮藕組織中PPO相對分子質(zhì)量在65 900~66 100之間。</p><p>  1.2.2 不同小麥多酚氧化酶活性檢測方法的比較</p><p>  以鄰苯

19、二酚和酪氨酸為底物所測PPO活性極顯著相關(guān),鄰苯二酚所測活性強,但酪氨酸所測活性的變異系數(shù)大。面粉PPO活性和面粉及面制品色澤的變化相關(guān)性最強,但籽粒和全麥粉中的PPO活性高,變異系數(shù)大。</p><p>  1.2.3 PPO活性與小麥粉主要理化指標的關(guān)系</p><p>  PPO活性與小麥粉白度成極顯著負相關(guān)性,與灰分含量成極顯著正相關(guān)性;前路粉流PPO活性比后路粉流低;物料含皮較

20、多的在線粉流PPO活性高;物料來源于小麥胚乳外層的粉流PPO活性高。</p><p>  1.2.4 核桃組織培養(yǎng)中外植體褐變多酚氧化酶活性的控制 </p><p>  在抑制PPO活性方面,PVPP作用最明顯,其次是Na2S2O3、AgNO3。</p><p>  1.2.5 石榴果皮中的多酚氧化酶(PPO)活性測定的最佳試驗條件</p>&l

21、t;p>  以鄰苯二酚為底物時,底物濃度宜大于20mmol/L,其最適波長為420nm,最適pH值為6.8,最適溫度為50℃,反應(yīng)時間不宜超過20min,反應(yīng)完成后在20min后測定PPO的活性最為穩(wěn)定。抑制劑NaHSO4的有效抑制濃度為0.8mmol/L。</p><p>  1.2.6 純化的蓮藕多酚氧化酶(PPO)與底物和抑制劑相互作用時的二級結(jié)構(gòu)變化</p><p>  園

22、二色譜分析表明蓮藕PPO主要含有α一螺旋和β一折疊結(jié)構(gòu)。與抑制劑作用后,蓮藕PPO活性顯著降低,同時伴隨其二級結(jié)構(gòu)中α-螺旋結(jié)構(gòu)明顯減少,表明蓮藕PPO的活性中心可能位于α-螺旋結(jié)構(gòu)中。熒光分析表明,蓮藕PPO與鄰苯三酚(pyroGAllic Acid,PA)作用后,酪氨酸殘基熒光強度略有降低,入max位移不明顯,色氨酸殘基熒光強度略有降低,入max紅移2 nm;而與蓮藕多酚(LoTus rooT polypHenol,LRP)作用后,

23、蓮藕PPO分子中酪氨酸(Tyr)和色氨酸(Trp)殘基熒光強度顯著提高,且其最大發(fā)射波長分別藍移6nm和紅移5nm。當加入異Vc鈉后,Tyr和Trp殘基最大發(fā)射峰顯著紅移,說明Trp和防殘基位于一定的疏水環(huán)境對維持PPO催化活性的優(yōu)勢構(gòu)象至關(guān)重要。</p><p>  1.2.7 磁場和抑制劑對蓮藕多酚氧化酶反應(yīng)動力學的影響</p><p>  以鄰苯二酚為底物,蓮藕PPO褐變反應(yīng)動力學

24、符合米氏方程所描述的單底物酶促反應(yīng)動力學,Km為0.775mol/L,Vmax為11.150U/min。Vc對PPO有較強的抑制作用,反應(yīng)動力學參數(shù)Km為0.081mol/L,Vmax為3.243U/min,呈現(xiàn)反競爭性抑制,表現(xiàn)為褐變出現(xiàn)滯后,隨Vc濃度的增大滯后時間逐漸增長,且呈現(xiàn)S型趨勢,并建立了相應(yīng)的反應(yīng)方程。不同磁場強度下,隨著處理時間的變化,PPO活性呈現(xiàn)波動性。3.17A/m磁場強度下處理4h的酶液其反應(yīng)動力學曲線表現(xiàn)為S

25、型,并建立了相應(yīng)的反應(yīng)方程。</p><p>  1.2.8 南湖菱果中多酚氧化酶抑制劑對其活性的影響</p><p>  南湖菱PPO催化反應(yīng)的最適溫度為30 0C ,最適pH 6.5,最佳吸收波長420 nm ,最大反應(yīng)速度Vmax=33.67 uniT/min,米氏常數(shù)Km= 0.286 mol/L。在3種抑制劑抗壞血酸、EDTA和檸檬酸中,抗壞血酸的抑制效果最好,最佳濃度為0.3

26、 mmol/L。</p><p>  1.2.9 二氧化氯(ClO2)對鮮切蓮藕在低溫貯藏期間多酚氧化酶(PPO)的影響</p><p>  100mg/L濃度的ClO2處理鮮切藕片5min、10 min、15 min后,在貯藏期間能抑制PPO的活性,而10 mg/L濃度對PPO的活性不起抑制作用反而促進了PPO的活性.100 mg/L ClO2處理鮮切藕片10 min抑制PPO的活性效

27、果最好。</p><p>  1.2.10 底物濃度、pH、溫度對鮮切蓮藕中PPO酶的影響</p><p>  鮮切蓮藕的PPO活性最適反應(yīng)底物濃度為0.02 mol/L,并且底物濃度與PPO活性的關(guān)系完全遵循MicHeAlis-MenTen的酶促動力學性質(zhì)。PPO最適pH值為7.0,pH對PPO的影響顯著,當pH<4.0時,PPO活性顯著下降,可見,調(diào)節(jié)pH值可有效地抑制PPO活

28、力。PPO活性的最適溫度為35℃,在0℃-5℃之間,蓮藕的PPO活性受到明顯的抑制。</p><p>  1.2.11 抑制劑對多酚氧化酶活性的影響</p><p>  添加抑制劑可使蓮藕PPO反應(yīng)速率發(fā)生變化。苯甲酸可與酶E結(jié)合生成無活性的二元復合物EI,減小可供鄰苯二酚進攻的游離酶E的濃度,也就降低了酶一底物ES的濃度,而且再增加底物濃度,反應(yīng)速率都不可能達到無抑制劑時的最大速率ym

29、ax,從而破壞了蓮藕PPO的正常催化氧化反應(yīng)系統(tǒng)。</p><p>  1.2.12 護色處理對多酚氧化酶活性的影響</p><p>  對鮮切蓮藕褐變抑制的最佳囚子組合為EDTA濃度為0.25% , Vc濃度為0.1%、草酸濃度為0.25%半胱氨酸濃度為0.7%、處理時間為8min。</p><p>  1.2.13 氣調(diào)包裝對鮮切蓮藕的保鮮效果</p&

30、gt;<p>  采用8種不同濃度配比的O2、N2和CO2氣體對鮮切蓮藕進行包裝,置于4℃下貯藏,定期測定鮮切蓮藕Vc的含量、多酚氧化酶活性、褐變度以及pH值變化,結(jié)果顯示100%O2組處理的鮮切蓮藕,其外觀最好,多酚氧化酶活性受到抑制。</p><p><b>  2 實驗部分</b></p><p>  2.1 主要試劑及設(shè)備</p>

31、<p>  2.1.1 實驗材料</p><p>  多酚氧化酶凍干粉、新鮮蓮藕</p><p>  2.1.2 主要試劑與儀器</p><p><b>  表2-1 實驗試劑</b></p><p>  表2-2 實驗儀器</p><p>  所有實驗用水均為去離子水。<

32、;/p><p>  表2-3磷酸緩沖液配制方法</p><p>  2.2 實驗流程 </p><p><b>  2.3 分析方法</b></p><p>  2.3.1 粗酶液的制備</p><p>  勻漿浸提法(勻漿浸提法提取所得粗酶液活性最高,操作簡便,提取所得粗酶液活性高,且可以直接

33、用于研究)</p><p>  配制pH7.0的NaH2PO4-NaH2PO4緩沖液,加入PVPP2.5g,加入蓮藕50g,用高速組織搗碎機搗碎,4℃下浸提2.5h。用4層脫脂紗布過濾,抽濾,所得濾液即為粗酶液;或在3,000r/min下離心15min,棄沉淀,上清液即為粗酶液。</p><p>  2.3.2 PPO活性的測定</p><p>  取濃度0.0

34、5 mol/L,pH值7.0的磷酸鹽緩沖溶液1.5 mL于1 cm比色皿中,加入0.1 mol/L的鄰苯二酚溶液1.0 mL,PPO粗酶液0.5 mL.混勻后在420 nm處比色,酶液加入后開始計時,每30 s記錄1次OD。</p><p>  單位時間內(nèi)OD值的變化率越大,表明PPO的相對活力越高。</p><p>  2.3.3 溫度對多酚氧化酶活性的影響</p>&l

35、t;p>  在l cm比色皿中,加入濃度為0.05 mol/L,pH值為7.0的磷酸鹽緩沖溶液1.5 mL,0.1 mol/L的鄰苯二酚溶液1.0 mL。在20℃-50℃(間隔5℃一個處理)下保溫10 min,加入相同溫度下保溫10 min的PPO粗酶液0.5 mL。在420nm下每隔30 s測定OD值。</p><p>  2.3.4 pH對多酚氧化酶活性的影響 </p><p&g

36、t;  分別配制pH3.0,4.0,5.0,6.0,6.5,7.0,7.5,8.0的磷酸緩沖液,在1.2ml 0.2 mol/L的底物中分別加入上述緩沖液1.6ml,30 ℃水浴,再加入0.5 ml酶液,于420 nm處測OD值,計算酶活力。</p><p>  底物濃度對PPO活性的影響</p><p>  分別配制濃度為0.01%,0.04%,0.06%,0.08%,0.09%,0.1

37、% 的鄰苯二酚溶液,用PPO凍干粉配成0.01g/ml的溶液,反應(yīng)底物溶液和酶液測定前在25℃恒溫水浴中保溫l0min;分別在不同底物濃度下測定420nm處的OD值,記錄吸光度的變化。</p><p>  2.3.6 抑制劑對多酚氧化酶活性的影響 </p><p>  用PPO凍干粉配成0.01g/ml的溶液,反應(yīng)底物溶液和酶液測定前在25℃恒溫水浴中保溫l0min;波長掃描和酶活測定均

38、在25℃溫度下進行。將100ul酶液加入3m1含10mmo11L鄰苯二酚、pH6.0的磷酸緩沖液中,迅速搖勻后在295nm下測定2min內(nèi)吸光度的變化,反應(yīng)2min后立即加入100μl60mmol/L(1.9%)的L-半胱氨酸溶液,繼續(xù)記錄吸光度的變化。</p><p>  隔天后用同樣方法測第二次。</p><p>  2.3.7 用抑制劑對自制的粗酶液進行活性測定分析</p&g

39、t;<p>  分別配制0.1%抗壞血酸、檸檬酸、亞硫酸鈉、硫脲、半胱氨酸5種抑制劑溶液,將100ul酶液加入3m1含10mmo11L鄰苯二酚、pH6.0的磷酸緩沖液中,迅速搖勻后在420nm下測定2min內(nèi)吸光度的變化,反應(yīng)2min后立即加入上述抑制劑,繼續(xù)測定。3 結(jié)果與分析</p><p>  3.1 溫度對PPO活性的影響</p><p>  表3-1 溫度對

40、PPO活性的影響</p><p>  圖3-1 溫度對PPO活性的影響</p><p>  由圖可知:PPO活性在35℃時最大,30℃時其次。</p><p>  3.2 pH對PPO活性的影響</p><p>  表3-2 不同pH下不同時間內(nèi)的OD(420nm)值(35℃)</p><p>  圖3-2

41、pH對PPO活性的影響</p><p>  由上圖可知:在pH為7.5-8之間,PPO的活性最大</p><p>  3.3 底物濃度對PPO活性的影響</p><p>  表3-3 底物濃度對PPO活性的影響</p><p>  圖3-3 底物濃度對PPO活性的影響</p><p>  根據(jù)此圖所得到的趨勢線數(shù)據(jù)

42、如下表:</p><p><b>  表3-4</b></p><p>  由圖可知:隨著底物濃度增加,酶促反應(yīng)速度呈現(xiàn)增長趨勢,當?shù)孜餄舛仍黾拥揭欢ǔ潭葧r,反應(yīng)速度達到最大值并趨于不變。當?shù)孜餄舛?gt;0.08 mol/L時,隨著底物濃度的增大,反應(yīng)速度不再上升。由此得出PPO活性最適反應(yīng)底物濃度為0.08 mol/L。</p><p> 

43、 3.4 抑制劑對PPO活性的影響</p><p>  3.4.1 L-半胱氨酸對25KU多酚氧化酶活性的影響</p><p>  表3-5 295nm下L-半胱氨酸對PPO活性的抑制</p><p>  圖3-4 295nm下L-半胱氨酸對PPO活性的抑制</p><p>  可以看出:酶活性在第一天比在第二天要強,此外,295nm處測

44、得的吸光度在加入L一半胱氨酸后,吸光度迅速上升,這說明加入L一半胱氨酸之后并沒有抑制PPO的活性,酶促反應(yīng)仍在進行,可能是L-半胱氨酸加入后生產(chǎn)的產(chǎn)物在295nm處的吸收效率很好。</p><p>  3.4.2 單抑制劑對PPO活性的影響</p><p>  表3-6 抑制劑對PPO活性的影響</p><p>  圖5-5 抑制劑對PPO活性的影響</p&

45、gt;<p>  由圖可知:Vc和NaHSO3對PPO的活性有強烈的抑制作用,NaHSO3對PPO活性的抑制作用更強,其次是半胱氨酸,而硫脲對PPO活性的抑制作用不明顯。</p><p>  由圖4和圖5 可知::當加入L一半胱氨酸后,反應(yīng)液顏色立即褪去,420nm處的吸光度迅速降低,而在295nm處以同樣方法測定時,吸光度則迅速升高,而且在加入L一半胱氨酸后的反應(yīng)中,295nm處的吸收速率比420

46、nm處的要大,這說明加入L-半胱氨酸后,生產(chǎn)的物質(zhì)酶在420nm處的吸收效率低,而在295nm下吸收率高。</p><p><b>  4 結(jié)論</b></p><p>  1)PO催化的酶促反應(yīng)是引起蓮藕褐變的主要原因。蓮藕PPO的最適溫度是35℃,最適pH值為7.5。因此,可以通過改變pH,低溫貯藏來抑制PPO活性。</p><p>  

47、2)亞硫酸鈉和Vc均能在低濃度下對蓮藕PPO起到較好的抑制作用。此外,乙酸、檸檬酸適合輔助抑制PPO。而半胱氨酸、硫脲抑制PPO效果不好。</p><p>  3)這些處理對蓮藕PPO活性及蓮藕褐變均有很好的抑制作用,作用時間也長。</p><p><b>  參考文獻</b></p><p>  [1]潘永貴,陳維信.鮮切蓮藕組織中多酚氧化酶

48、的分離純化. 食品與生物技術(shù)學報,2008,27(2):55-29</p><p>  [2]姚顯偉,郭禎祥,馬洪娟,張杏麗.在線粉流中小麥多酚氧化酶活性分析.糧食與飼料工業(yè),2010,(5):4-6</p><p>  [3]張曉,田紀春. 不同小麥多酚氧化酶活性檢測方法的比較.山東農(nóng)業(yè)人學學報(自然科學版), 2008,39( 1): 15- 18</p><p&g

49、t;  [4]張燕,何暉,吳國良.核桃組織培養(yǎng)中外植體褐變多酚氧化酶活性的控制.安徽農(nóng)業(yè)科學,2010,38(20): 10553-10556</p><p>  [5]胡青霞,陳延惠,李洪濤,張艷,王林忠.石榴果皮中多酚氧化酶測定最佳試驗條件的確定.河南農(nóng)業(yè)科學,2007,(2):81-84</p><p>  [6]李春美,胡婉峰,楊立,楊杰. 蓮藕多酚氧化酶與底物或抑制劑相互作用的光

50、譜學研究.分析試驗室,2010,29(8):14-16</p><p>  [7]高夢祥,胡翠翠,嚴奉偉,張長峰.磁場和抑制劑對蓮藕多酚氧化酶反應(yīng)動力學的影響.農(nóng)業(yè)機械學報,2008,39(1):78-81</p><p>  [8] 詹麗娟,賴齊賢,朱祝軍,葛志平.南湖菱果中多酚氧化酶一般特性研究.中國食品學報,2006,6(5):59-62</p><p>  

51、[9] 黃永鋒,宋俊梅.二氧化氯對鮮切蓮藕多酚氧化酶的影響研究.現(xiàn)代食品科技, 2008,24(10):995-998</p><p>  [10] 高愿軍,郝亞勤,南海娟,吳廣輝,高雪麗.蓮藕多酚氧化酶酶學性質(zhì)的研究.食品研究與并發(fā), 2006,27(7):17-18</p><p>  [11] 高晗,孫俊良,高愿軍,南海娟,劉倩.氣調(diào)包裝對鮮切蓮藕保鮮效果研究.食品科學, 2008,

52、29(10):612-614</p><p>  [12] 許金蓉,周明全,何建軍,胡中立,王清章.蓮藕不同部位的酶活性研究.湖北農(nóng)業(yè)科學, 2005,(3):89-90</p><p>  [13] 黃建韶,田宏現(xiàn). 蓮藕中多酚氧化酶的性質(zhì).吉苜大學學報(自然科學版), 2002,23(2):82-84</p><p>  [14] 吳光旭,張長峰. 復合護色液對

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