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文檔簡介
1、目的:
1.體外原代培養(yǎng)SD大鼠骨髓間充質(zhì)干細胞(Bone marrow mesenchymal stem cells,BMSCs)、GFP轉(zhuǎn)染骨髓間充質(zhì)干細胞(GFP-BMSCs)、成骨細胞(osteoblasts,OB)、雪旺細胞(Schwann cells,SCs)、感覺神經(jīng)元(dorsal rootganglion,DRG)、交感神經(jīng)元(superior cervical ganglion,SCG)細胞。觀察DRG
2、、SCG、SCs對GFP-BMSCs分化的成骨細胞增殖的影響。SCs對BMSCs分化OB及顱骨來源OB增殖的影響及機制研究。
2.研究采用熒光微球655(Quantum dot655, QD655)標記大鼠BMSCs體外可行性研究。探討此染料對大鼠BMSCs的毒性、增殖、成骨分化、動態(tài)標記率等功能,為體內(nèi)示蹤研究打下研究基礎(chǔ)。
3.研究膠原-生物活性玻璃材料的生物相容性研究,包括溶血試驗,浸提液對RSC96細
3、胞株增殖試驗,膠原-生物活性玻璃干濕態(tài)下力學強度研究,最佳接種液體量研究,最佳接種方式方式研究、BMSCs與SCs粘附于材料增殖研究,材料對細胞促增殖試驗及向成骨促分化試驗,以及初步體內(nèi)皮下包埋驗證成骨試驗。
4.探討采用克氏針與快速成型技術(shù)制成接骨板固定大鼠8mm骨缺損穩(wěn)定性研究,采用體內(nèi)軸向壓縮生物力學測試及體內(nèi)動態(tài)觀察固定失效率進行試驗,探求兩種固定方式的方法、手術(shù)技巧、優(yōu)點及缺點,探求合適固定大鼠骨缺損固定方式。<
4、br> 5.探討采用大鼠隱動靜脈及隱神經(jīng)束作為神經(jīng)血管束移植作為外源性因素同步構(gòu)建神經(jīng)血管化組織工程骨的可行性,以及采用熒光微球標記的SCs與GFP轉(zhuǎn)染的成骨細胞聯(lián)合負載于膠原-生物活性玻璃體內(nèi)示蹤可行性研究。
方法:
1.以2周齡SD大鼠為試驗動物模型,采用股骨、脛骨骨髓沖洗法收集細胞,以培養(yǎng)的第3代BMSCs用于試驗;采用1d齡乳鼠2只,采用75%酒精浸泡15min,無菌取出顱骨,采用無菌眼科剪建成
5、1-2mm3碎片。向剪碎的骨組織中加入1mL0.25%的胰蛋白酶37℃,消化90min,稍離,去上清。加入0.2%Ⅰ型膠原酶3-5mL,37℃,連續(xù)消化2次60min。中止消化,收集細胞,重復上述試驗,收集細胞,計數(shù)后,種植于25 cm2培養(yǎng)瓶中,置于37℃、5%CO2恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。24h后換液,以后每2~3d換液1次。達到80%~90%融合時(原代培養(yǎng)3~5d),消化傳代,分組培養(yǎng),采用堿性磷酸酶染色進行鑒定,2-5代用于試驗;采
6、用15d孕鼠,無菌取出胎鼠,取背根神經(jīng)節(jié),0.25%胰酶消化50min,種植到預先鋪板的蓋玻片上,進行感覺神經(jīng)元培養(yǎng);采用1d齡乳鼠,取頸上神經(jīng)節(jié),0.25%胰酶消化30min,種植到預先鋪板的培養(yǎng)板;取1d乳鼠,取出坐骨神經(jīng)及臂叢神經(jīng),采用組織塊貼壁法獲得SCs。采用P3BMSCs向成骨誘導分化2周,進行鑒定;分別采用SCs、DRG、SCG與顱骨來源成骨細胞和BMSCs來源成骨細胞共培養(yǎng)檢測,檢測共培養(yǎng)后成骨細胞增殖及分化機制。
7、> 2.采用QD655按照試劑盒推薦濃度,分別將QD試劑A和試劑載體B各取1μL混置于1.5mL微量離心管中,放于孵育15min,加入100μL培養(yǎng)基,渦旋30s,向管中加入含106個P3細胞的0.2mL懸液,打勻后置于37℃、5%CO2恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)1h,用完全培養(yǎng)基漂洗兩遍后,在熒光顯微鏡下檢測。根據(jù)QD試劑推薦濃度標記第3代細胞(P3)為試驗組,以未用QD標記的細胞作為空白對照組。用苔盼藍拒染法檢測標記后細胞存活率,用MT
8、T法觀察染料對細胞增殖性的影響,采用茜素紅、堿性磷酸酶染色、real-time PCR鑒定對成骨分化的影響;分別在標記后即刻、1w、2w、4w、6w利用熒光顯微鏡計數(shù)檢測兩組標記時間和陽性率;并用電鏡觀察標記后細胞在材料的貼附性。
3.華南理工大學材料學院提供膠原-生物活性玻璃,提取材料浸提液,實施溶血試驗、細胞增殖試驗,將細胞粘附材料分別于1d、3d、5d、7d進行對比電鏡觀察,并將SCs負載與膠原-生物活性玻璃上,采用
9、電鏡觀察材料對SCs貼壁情況;采用膠原-生物活性玻璃在干濕態(tài)下,對濕態(tài)下膠原材料進行力學強度對比;取6塊6×8mm2,采用微量注射器,每20μL液體量滴加材料,直至材料地面有液體滲出為止,統(tǒng)計注射液體量,計算最佳加液量;采用5點注射,分別于材料表面0mm、2mm、4mm進行梯度注射尋求最佳注射位點;取P3代BMSCs接種于材料及24孔板中,其中一部分材料采用SD大鼠骨髓間充質(zhì)干細胞培養(yǎng)基培養(yǎng),一部分材料采用成骨誘導,分別于與之相同培養(yǎng)基
10、的細胞進行對比,2w后采用real-time PCR進行檢測,檢測成骨分化程度。取P3BMSCs向成骨分化2周,種植在膠原-生物活性玻璃上,切成1ml薄片皮下包埋裸鼠背部,將觀察材料有誘導成骨性能。
4.采用快速成型技術(shù),自行設(shè)計塑料接骨板,材料為進口無毒材料。制備SD大鼠股骨8mm骨缺損。共采用12只350-500g大鼠處死,取出股骨進行接骨板固定與克氏針髓內(nèi)固定,測試軸向生物力學強度,檢測兩種固定方式軸向抗壓縮能力;取
11、24只350-500g大鼠隨機分為A組與B組,A組采用接骨板固定,B組采用克氏針固定。分別于術(shù)后2w、4w、8w進行X線片,評價固定缺損穩(wěn)定狀況,總結(jié)兩組失敗率及類型,總結(jié)適合大鼠最佳固定方式。
5.采用9只150-200g SD大鼠,暴露并游離隱動靜脈隱神經(jīng)束,移植于預先處理的膠原-生物活性玻璃,于術(shù)后3d、7d、14d采用冰凍切片進行HE染色觀察血管網(wǎng)形成;采用GFP轉(zhuǎn)染BMSCs向體外誘導成骨2周,采用Qtracke
12、r655標記大鼠SCs接種于膠原-生物活性玻璃上,移植于大鼠8mm骨缺損體內(nèi)1周后取出采用共聚焦觀察兩種細胞示蹤可行性。
結(jié)果:
1.原代SD大鼠BMSCs、OB、DRG、SCG、SCs培養(yǎng)成功,DRG于共培養(yǎng)5d時,對成骨細胞較空白對照組有明顯的促增殖作用,有顯著性差異(相應F=0.802,P=0.007)而與其他對照組及無明顯差別,SCG各個時間段對顱骨來源成骨細胞較對照組均無促增殖作用(P>0.05)。
13、采用96孔共培養(yǎng)板,共培養(yǎng)1d、3d、5d無統(tǒng)計學差異,共培養(yǎng)7d、9d兩個時間段SCs對成骨細胞有明顯的促增殖作用,較對照組均有顯著性差異(P<o.05)。SCs對BMSCs來源OB在共培養(yǎng)1、3d兩組沒有統(tǒng)計學差異,余下3個時間段均有統(tǒng)計學差異,試驗組由于對照組。SCs在3d、5d、7d對成骨細胞作用在ALP、OPN、OCN、BMP-2、CollamRNA較未共培養(yǎng)的成骨細胞均低表達,表明SCs對成骨細胞起抑制分化作用。而對BMSC
14、s來源成骨細胞,在ALP、OPN、OCN、BMP-2、CollamRNA在3d是均有高表達,ALP、Colla在第7d呈低表達,提示SCs在成骨誘導培養(yǎng)環(huán)境中對BMSCs來源的成骨細胞起到促分化作用。
2.試驗組與對照組細胞存活率均>90%,比較差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05);培養(yǎng)1、3、5、7、9d兩組增殖率比較差異均無統(tǒng)計學意義(P>0,05)。標記的BMSCs經(jīng)誘導分化2周后,茜素紅及ALP染色均呈陽性,實時熒光定
15、量PCR檢測經(jīng)標記的BMSCs的OPNmRNA、BglapmRNA、Colla1mRNA、Alp1mRNA、Bmp2mRNA較對照組均呈高表達。熒光顯微鏡下胞漿呈紅色熒光,標記后即可標記率可達96.5±1.59%,隨著標記時間的增加,標記率下降,分別為1w93.30±1.51%、2w72.40±2.90%、4w40.10±3.60%、6w10.00±1.70%,對照組各時間點標記陽性率均為0;掃描電鏡觀察標記后細胞和材料貼附良好。
16、> 3.采用膠原-生物活性玻璃材料中,采用支架材料浸提液,對兔靜脈血沒有產(chǎn)生溶血作用,對RSC96增殖較對照組在各個時間段均無抑制作用;采用軸向壓縮測試力學強度,證實濕態(tài)下支架材料的強度高于膠原組織,而明顯低于干性支架材料;采用逐漸加液體的方法,探討出最佳加液量為0.88ml/cm3;采用五點梯度為2mm為最佳注射方法,可將細胞均勻種植到材料上;材料對BMSCs起到抑制分化作用;膠原-生物活性玻璃負載成骨細胞包埋裸鼠體內(nèi)可以形成骨
17、質(zhì),構(gòu)建的組織工程骨具在BMP-2、OPN、CollamRNA較正常骨高表達,提示組織工程骨處于快速成骨期。
4.克氏針髓內(nèi)固定及接骨板固定兩種方式手術(shù)技巧討論,克氏針固定較接骨板固定更為方便,所需要時間更短,兩者存在顯著性差異(P<0.05)。并術(shù)后2、4、8w進行X線片統(tǒng)計固定失效率,并在體外進行軸向壓縮生物力學檢測。探討最佳固定方式。發(fā)現(xiàn)在體外生物力學強度測試中,接骨板軸向壓縮所受力為40.38±4.04,克氏針壓縮
18、失效值所受力為29.53±2.95,克氏針徹底失效值所受力為58.49±5.85,三組間均有統(tǒng)計學差異(P<0.05)。在動態(tài)X線片觀察中發(fā)現(xiàn),克氏針組出現(xiàn)失敗率為91.67%(11/12),接骨板失敗率為16.67%(2/12)。本部分研究得出在大鼠股骨骨缺損中,應采用接骨板固定更為理想。
5.在大鼠模型中可采用隱動脈、隱靜脈、隱神經(jīng)束作為整體血管神經(jīng)束移植構(gòu)建血管神經(jīng)化組織工程骨,HE染色鑒定材料有較多血管形成,并隨時
19、間遞增血管分布密度增加??刹捎寐《綠FP轉(zhuǎn)染BMSCs以及QD655標記SCs種植到膠原-生物活性玻璃進行體內(nèi)示蹤。證實隱動脈、靜脈、神經(jīng)束可以作為整體進行移植,在材料內(nèi)可以形成較多血管組織。在共聚焦顯微鏡下可以對兩種細胞進行示蹤,并在一周的X線片中可以發(fā)現(xiàn)有成骨形成。
結(jié)論:
1.DRG可能對成骨細胞起到促增殖作用;SCG對成骨細胞不起到促增殖作用;SCs對成骨細胞起到明顯的促增殖作用;SCs對顱骨來源的
20、成骨細胞起到抑制分化作用;對骨髓間充質(zhì)干細胞來源的成骨細胞起到促進分化作用。
2.Qtraker655對大鼠BMSCs標記時間長,標記率及安全性高,并不改變細胞的成骨性能,是一種良好標記物。
3.膠原-生物活性玻璃是一種生物相容性好,可構(gòu)建骨組織的支架材料。
4.在大鼠股骨骨缺損固定中,接骨板效果優(yōu)于克氏針髓內(nèi)固定。
5.在大鼠構(gòu)建神經(jīng)血管化組織工程,隱動靜脈隱神經(jīng)束可作為外源性因
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