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文檔簡介
1、菌蛻(Bacterial ghosts,BGs)是沒有內(nèi)容物的完整細(xì)菌外殼。通過PhiX174溶菌基因E的表達在革蘭氏陰性菌細(xì)胞膜表面形成跨膜孔道,導(dǎo)致細(xì)菌內(nèi)容物的丟失,形成菌蛻。菌蛻形成過程不引起細(xì)胞表面其他結(jié)構(gòu)的理化變化,因此它能夠保持與活菌細(xì)胞膜相似的形態(tài)、黏附性、細(xì)菌表面抗原等特性,可以有效誘導(dǎo)機體的體液、細(xì)胞免疫應(yīng)答及增強粘膜免疫反應(yīng)。
本實驗以菌蛻為基礎(chǔ),擬制備出安全、高效的漁用基因工程疫苗。根據(jù)噬菌體 PhiX1
2、74溶菌基因E的序列,設(shè)計含有EcoR I、Sal I酶切位點的引物。利用PCR技術(shù)擴增出 E基因片段,連接到 pMD18-T載體上,構(gòu)建了克隆載體 pT-E。測序發(fā)現(xiàn) E基因第20位堿基發(fā)生了致死突變,因而導(dǎo)致 E基因不能正常表達。根據(jù)突變位點的位置,通過延長引物序列修正突變位點,從而得到了正確的溶菌基因 E序列。將其連接到具有溫控表達系統(tǒng)cI857-PR/PL的表達載體 pBV220上,成功構(gòu)建了氨芐青霉素抗性溶菌質(zhì)粒 pBV-El
3、ysislysis。將溶菌質(zhì)粒轉(zhuǎn)化入大腸桿菌 DE3,使用氨芐青霉素篩選出陽性克隆。當(dāng)含有溶菌質(zhì)粒的大腸桿菌在28℃生長到對數(shù)期,OD600約為0.3時,通過升高溫度至42℃誘導(dǎo) E基因表達。誘導(dǎo)開始后,每20min取樣測定菌液吸光度,并取菌液涂布培養(yǎng),檢測活菌數(shù)量。誘導(dǎo)20min后,E基因表達明顯,菌液吸光度開始下降。隨著誘導(dǎo)時間延長,菌液吸光度緩慢降低至平衡,活菌數(shù)迅速下降。誘導(dǎo)3h后溶菌完全,得到了大腸桿菌菌蛻,溶菌效率達到100
4、%。溶菌質(zhì)粒轉(zhuǎn)化入野生鞘氨醇假單胞菌,誘導(dǎo)0.5h后開始溶菌,誘導(dǎo)7h后溶菌效率達99.994±0.005%。經(jīng)掃描電鏡觀察,可以看到明顯的溶菌孔道。
由于近些年來抗生素的濫用,導(dǎo)致了多數(shù)水生致病菌對氨芐青霉素均不敏感,轉(zhuǎn)化后很難篩選出正確的陽性克隆,因此本實驗又進一步構(gòu)建了具有慶大霉素抗性的廣宿主溶菌質(zhì)粒 pBM-C-Elysis。構(gòu)建的廣宿主質(zhì)粒仍然采用溫控表達系統(tǒng)cI857-PR/PL實現(xiàn) E基因的可調(diào)控表達。根據(jù)溫控溶
5、菌盒和廣宿主載體 pBBR-MCS-5的序列,設(shè)計含有BamH I、Xho I酶切位點的引物,利用PCR技術(shù)擴增出溫控溶菌盒,直接雙酶切后連接到經(jīng)過相同酶切的pBBR-MCS-5載體上,成功構(gòu)建了具有慶大霉素抗性的廣宿主溶菌質(zhì)粒 pBM-C-Elysis。將溶菌質(zhì)粒轉(zhuǎn)化入大腸桿菌 DE3表達菌中,28℃擴大培養(yǎng)大腸桿菌至對數(shù)生長期,OD600約為0.4時,開始升高溫度至42℃。熱誘導(dǎo)40min后,開始溶菌,菌液吸光度有所降低。誘導(dǎo)2h后
6、,菌液吸光度基本保持穩(wěn)定;熱誘導(dǎo)40min后,活菌數(shù)迅速降低;誘導(dǎo)4h后溶菌效率為99.9999±0.0001%。溶菌質(zhì)粒轉(zhuǎn)化入野生豚鼠氣單胞菌中,熱誘導(dǎo)1h后,菌液吸光度開始下降并趨于平穩(wěn);誘導(dǎo)1h后,活菌數(shù)迅速降低;誘導(dǎo)5h后,溶菌效率達99.9997±0.0003%,低壓冷凍干燥后無活菌。掃描電鏡下可觀察到明顯的溶菌孔道,并且溶菌孔道只占細(xì)菌表面很少一部分,其他結(jié)構(gòu)并未受到破壞。
豚鼠氣單胞菌能夠引起多種魚類疾病。將制備
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